Caractéristiques du produit
Technologie de multiplication optique innovante
La technologie de zoom unique permet aux utilisateurs d'analyser des cellules dans une large gamme de diamètres
Lors de l'utilisation des modèles BioApp à fond clair dans le , la nouvelle technologie de zoom permet à l'opérateur d'identifier avec précision les objets cellulaires dans une plage de diamètre allant de 1,0 µm à 180,0 µm.Les images acquises montrent même les détails des cellules individuelles.Cela élargit la gamme d'applications même aux objets cellulaires, qui ne pouvaient pas être analysés précisément dans le passé.
Exemples de lignées cellulaires typiques en corrélation avec les grossissements sélectionnables 5x, 6,6x et 8x |
Gamme de diamètre de grossissement | 5x | 6,6x | 8x |
>10µm | 5-10 µm | 1-5 µm |
Compte | ✓ | ✓ | ✓ |
Vabilité | ✓ | ✓ | ✓ |
Type de cellule | - MCF7
- HEK293
- CHO
- MSC
- RAW264.7
| - Cellule immunitaire
- La levure de bière
- Cellules embryonnaires de poisson zèbre
| - Pichia Pastoris
- Chlorelle vulgaire (FACHB-8)
- Escherichia
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Algorithmes d'analyse d'image basés sur l'IA progressive
Le FL utilise les avantages de l'intelligence artificielle pour développer des algorithmes d'auto-apprentissage.Ils sont capables d'identifier et d'analyser de multiples caractéristiques des cellules.L'intégration des paramètres de forme cellulaire permet une analyse hautement précise et reproductible de l'état du cycle cellulaire et/ou fournit des données sur la corrélation entre le changement de morphologie cellulaire, la formation de grappes cellulaires (agrégats, sphéroïdes de petite taille) et les conditions affectant.
Résultats d'étiquetage des cellules souches mésenchymateuses de forme irrégulière (MSC; 5x mangification) dans une culture proliférante
- Les cercles verts marquent les cellules vivantes
- Les cercles rouges marquent les cellules mortes
- Cellules agrégées de cercles blancs
La lignée cellulaire RAW264.7 est petite et facilement agglomérée.L'algorithme AI peut identifier les cellules dans les amas et compter
- Les cercles verts marquent les cellules vivantes
- Les cercles rouges marquent les cellules mortes
- Cellules agrégées de cercles blancs
Taille inégale des cellules embryonnaires de poisson zèbre (grossissement 6,6X
- Les cercles verts marquent les cellules vivantes
- Les cercles rouges marquent les cellules mortes
- Cellules agrégées de cercles blancs
Conception intuitive de l'interface utilisateur graphique (GUI)
L'interface graphique structurée claire permet une exécution efficace et confortable de l'expérience
- Vaste bibliothèque avec des types de cellules prédéfinis et des BioApps (protocoles de modèles d'analyse).Un seul clic sur la BioApp, et le test peut commencer.
- L'interface graphique conviviale permet de basculer facilement entre les différentes options de menu et garantit une expérience de test confortable
- Des modules de menu clairs et structurés assistent l'utilisateur dans la routine de test quotidienne
Sélectionnez la BioApp, entrez un ID d'échantillon et démarrez l'analyse
128 Go de capacité de stockage de données interne, suffisante pour stocker env.50 000 résultats d'analyse dans le (R) Mira.Pour un accès rapide, les données recherchées peuvent être sélectionnées par diverses options de recherche.
Une fonctionnalité utile pour gagner du temps est le calculateur de dilution récupérable.Il fournira les volumes exacts de diluant et d'échantillon de cellules d'origine, une fois la concentration finale de cellules et le volume cible entrés.Cela rend confortable le passage des cellules vers leurs sous-cultures.
Fonctionnalités d'application multiples
Les fonctions d'analyse du Countstar Mira aident l'utilisateur à comprendre les changements dynamiques à l'intérieur d'une culture cellulaire et aident à optimiser leurs conditions de croissance.
Le logiciel avancé de reconnaissance d'image basé sur l'IA du est capable de fournir plusieurs paramètres.Outre les résultats standard de la concentration cellulaire et de l'état de viabilité, la distribution de la taille des cellules, une éventuelle formation d'amas cellulaires, l'intensité de fluorescence relative de chaque cellule, la forme d'une courbe de croissance et leur facteur de morphologie externe sont des paramètres importants pour évaluer le réel état d'une culture cellulaire.Les graphiques générés automatiquement des courbes de croissance, la distribution des diamètres et les histogrammes d'intensité de fluorescence, l'analyse des cellules individuelles à l'intérieur des agrégats et la détermination du paramètre de compacité cellulaire permettent à l'utilisateur de mieux comprendre les processus dynamiques à l'intérieur d'une culture cellulaire examinée du début à la fin du processus.
Histogramme
Histogramme de distribution de l'intensité de fluorescence relative (RFI)
Histogramme de distribution de diamètre
Courbe de croissance
Image(s) de test et résultats
Diagramme de la courbe de croissance
Application du produit
Dosages de densité et de viabilité cellulaire à double fluorescence AO/PI
La méthode de coloration AO/PI à double fluorescence est basée sur le principe que les deux colorants, l'orange d'acridine (AO) et l'iodure de propidium (PI), s'intercalent entre les acides nucléiques du chromosome dans le noyau d'une cellule.Alors que l'AO est capable de pénétrer à tout moment dans les membranes intactes du noyau et de tacher l'ADN, le PI ne peut traverser que la membrane compromise du noyau d'une cellule mourante (morte).L'AO accumulé dans le noyau cellulaire émet une lumière verte à un maximum de 525 nm, s'il est excité par à 480 nm, PI envoie une lumière rouge avec son amplitude à 615 nm, lorsqu'il est excité à 525 nm.L'effet FRET (Foerster Resonance Energy Transfer) garantit que le signal émis de l'AO à 525 nm est absorbé en présence du colorant PI pour éviter une double émission de lumière et un débordement.Cette combinaison spéciale de colorants AO/PI permet de filtrer spécifiquement les cellules contenant des noyaux en présence d'acaryotes comme les érythrocytes.
Les données de Countstar Mira FL ont montré une bonne linéarité pour la dilution en gradient des cellules HEK293
Analyse de l'efficacité de la transfection GFP/RFP
L'efficacité de la transfection est un indice important dans le développement et l'optimisation des lignées cellulaires, dans le réglage des vecteurs viraux et pour la surveillance du rendement des produits dans les processus biopharmaceutiques.Il est devenu le test le plus fréquemment établi pour déterminer rapidement et de manière fiable le contenu d'une protéine cible à l'intérieur d'une cellule.Dans diverses approches de thérapie génique, c'est un outil indispensable pour contrôler l'efficacité de transfection de la modification génétique souhaitée.
Le fournit non seulement des résultats précis et exacts, par rapport à la cytométrie en flux, mais l'analyseur fournit également des images comme preuve de preuve.A côté de cela, il simplifie et accélère considérablement l'analyse pour rationaliser le développement d'un processus de développement et de production.
Série d'images, acquise par le Countstar (R) Mira, montrant des niveaux d'efficacité de transfection croissants (de gauche à droite) de cellules génétiquement modifiées (lignée cellulaire HEK 293 ; exprimant la GFP à différentes concentrations)
Résultats de mesures comparatives, exécutées avec un B/C CytoFLEX, confirmant les données d'efficacité de transfection GFP des cellules HEK 293 modifiées, analysées dans un Countstar Mira
Analyse de viabilité du bleu Trypan largement établie
Le test de discrimination de la viabilité du bleu Trypan est toujours l'une des méthodes les plus largement utilisées et les plus fiables pour déterminer le nombre de cellules mortes (mourantes) dans une culture de cellules en suspension.Les cellules viables avec une structure de membrane cellulaire externe intacte empêcheront le bleu Trypan de pénétrer dans la membrane.Dans le cas où la membrane cellulaire fuit en raison de la progression de sa mort cellulaire, le bleu trypan peut passer la barrière membranaire, s'accumule dans le plasma cellulaire et colore la cellule en bleu.Cette différence optique peut être utilisée pour distinguer les cellules vivantes immaculées des cellules mortes par les algorithmes de reconnaissance d'image du FL.
- Images de trois lignées cellulaires colorées au bleu Trypan, acquises dans un Countstar (R) Mira FL en mode fond clair.
- Résultats d'un gradient de dilution de la série HEK 293