제품 특징
혁신적인 광증배 기술
사용자가 다양한 직경의 세포를 분석할 수 있는 고유한 확대/축소 기술
에서 명시야 BioApp 템플릿을 사용할 때 새로운 Zooming 기술을 통해 작업자는 직경 1.0µm ~ 180.0µm 범위 내에서 세포 물체를 정확하게 식별할 수 있습니다.획득한 이미지는 단일 세포의 세부 사항까지 보여줍니다.이는 과거에는 정확하게 분석할 수 없었던 세포 물체까지 적용 범위를 확장합니다.
선택 가능한 배율 5x, 6.6x 및 8x와 관련된 일반적인 세포주의 예 |
배율 직경 범위 | 5배 | 6.6배 | 8배 |
>10μm | 5~10μm | 1-5μm |
계산 | ✓ | ✓ | ✓ |
가능성 | ✓ | ✓ | ✓ |
세포 유형 | - MCF7
- HEK293
- 조
- MSC
- RAW264.7
| - 면역세포
- 맥주 효모
- Zebrafish 배아 세포
| - 피치아 파스토리스
- 클로렐라 불가리스(FACHB-8)
- 대장균
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프로그레시브 AI 기반 이미지 분석 알고리즘
FL은 인공 지능의 장점을 사용하여 자가 학습 알고리즘을 개발합니다.그들은 세포의 여러 특성을 식별하고 분석할 수 있습니다.세포 모양 매개변수의 통합은 세포 주기 상태의 매우 정확하고 재현 가능한 분석을 허용하고 세포 형태의 변화, 세포 클러스터(집합체, 작은 크기의 회전 타원체) 형성 및 영향을 미치는 조건 간의 상관 관계에 대한 데이터를 제공합니다.
증식하는 배양에서 불규칙한 모양의 중간엽 줄기세포(MSC, 5x 확대)의 라벨링 결과
- 녹색 원은 살아있는 세포를 표시합니다.
- 빨간 원은 죽은 세포를 표시합니다.
- 흰색 원 집계 셀
RAW264.7 세포주는 작고 쉽게 덩어리집니다. AI 알고리즘은 덩어리의 세포를 식별하고 계산할 수 있습니다.
- 녹색 원은 살아있는 세포를 표시합니다.
- 빨간 원은 죽은 세포를 표시합니다.
- 흰색 원 집계 셀
zebrafish 배아 세포의 불균일한 크기(6.6X 배율
- 녹색 원은 살아있는 세포를 표시합니다.
- 빨간 원은 죽은 세포를 표시합니다.
- 흰색 원 집계 셀
직관적인 GUI(그래픽 사용자 인터페이스) 디자인
명확하고 구조화된 GUI를 통해 효율적이고 편안한 실험 실행
- 사전 설정된 세포 유형 및 BioApps(어세이 템플릿 프로토콜)가 있는 광범위한 라이브러리.BioApp을 한 번만 클릭하면 테스트를 시작할 수 있습니다.
- 사용자 친화적인 GUI를 통해 다양한 메뉴 옵션 간에 쉽게 전환할 수 있으며 편안한 테스트 경험을 보장합니다.
- 명확한 구조화된 메뉴 모듈은 일일 테스트 루틴에서 사용자를 지원합니다.
BioApp을 선택하고 샘플 ID를 입력하고 분석 실행을 시작합니다.
약 128GB의 내부 데이터 저장 용량으로 (R) Mira에서 50,000개의 분석 결과.빠른 접근을 위해 다양한 검색 옵션을 통해 원하는 데이터를 선택할 수 있습니다.
시간을 절약하는 유용한 기능은 검색 가능한 희석 계산기입니다.세포의 최종 농도와 목표 부피가 입력되면 희석제와 원래 세포 샘플의 정확한 부피를 전달합니다.이것은 세포를 하위 배양으로 편안하게 통과시킵니다.
다양한 애플리케이션 기능
Countstar Mira 의 분석 기능은 사용자가 세포 배양 내부의 동적 변화를 이해하도록 지원하고 성장 조건을 최적화하는 데 도움이 됩니다.
의 고급 AI 기반 이미지 인식 소프트웨어는 여러 매개변수를 전달할 수 있습니다.세포 농도 및 생존 상태의 표준 결과 외에도 세포 크기 분포, 세포 클러스터의 형성 가능성, 각 단일 세포의 상대 형광 강도, 성장 곡선의 형태 및 외부 형태 인자는 실제 평가에 중요한 매개 변수입니다. 세포 배양 상태.자동으로 생성된 성장 곡선 그래프, 직경 분포 및 형광 강도 히스토그램, 응집체 내부의 단일 세포 분석 및 세포 소형화 매개변수의 결정은 사용자가 프로세스의 시작부터 종료까지 검사된 세포 배양 내부의 동적 프로세스를 더 잘 이해할 수 있도록 합니다.
히스토그램
상대 형광 강도(RFI) 분포 히스토그램
직경 분포 히스토그램
성장 곡선
테스트 이미지 및 결과
성장 곡선 다이어그램
제품 적용
AO/PI 이중 형광 세포 밀도 및 생존력 분석
이중 형광 AO/PI 염색 방법은 Acridine Orange(AO)와 Propidium Iodide(PI) 염료가 세포 핵에 있는 염색체의 핵산 사이에 삽입된다는 원리를 기반으로 합니다.AO는 언제든지 손상되지 않은 핵막을 투과하여 DNA를 염색할 수 있는 반면, PI는 죽어가는(죽은) 세포의 손상된 핵막만 통과할 수 있습니다.세포핵에 축적된 AO는 최대 525nm에서 녹색광을 방출하고, 480nm에서 여기되면 PI는 525nm에서 여기될 때 진폭이 615nm인 적색광을 방출합니다.FRET(Foerster Resonance Energy Transfer) 효과는 525nm에서 AO의 방출된 신호가 PI 염료의 존재하에 흡수되어 이중 발광 및 유출을 방지하도록 보장합니다.AO/PI의 이 특별한 염료 조합을 통해 적혈구와 같은 진핵 세포가 있는 경우 핵 함유 세포를 특이적으로 필터링할 수 있습니다.
Countstar Mira FL 데이터는 HEK293 세포의 기울기 희석에 대해 우수한 선형성을 나타냈습니다.
GFP/RFP 형질감염 효율 분석
형질감염 효율은 세포주 개발 및 최적화, 바이러스 벡터 튜닝, 바이오제약 공정의 제품 수율 모니터링에 있어 중요한 지표입니다.세포 내부의 표적 단백질의 함량을 빠르고 안정적으로 측정하기 위해 가장 많이 확립된 검사가 되었습니다.다양한 유전자 치료 접근법에서 원하는 유전자 변형의 transfection 효율을 제어하는 데 없어서는 안될 도구입니다.
는 유세포 분석에 비해 정확하고 정확한 결과를 제공할 뿐만 아니라 분석기가 증거 증거로 이미지를 제공합니다.이 외에도 분석을 크게 단순화하고 속도를 높여 개발 및 생산 프로세스의 개발을 간소화합니다.
Countstar (R) Mira가 획득한 이미지 시리즈, 유전자 변형 세포(HEK 293 세포주, 다양한 농도에서 GFP 발현)의 증가하는 형질감염 효율 수준(왼쪽에서 오른쪽으로)을 보여줍니다.
Countstar Mira 에서 분석한 변형된 HEK 293 세포의 GFP 형질감염 효율 데이터를 확인한 B/C CytoFLEX로 실행한 비교 측정 결과
널리 확립된 Trypan Blue 생존 분석
Trypan Blue 생존력 판별 분석은 현탁 세포 배양 내부의 (죽어가는) 죽은 세포의 수를 결정하기 위해 여전히 가장 널리 사용되는 신뢰할 수 있는 방법 중 하나입니다.손상되지 않은 외부 세포막 구조를 가진 생존 가능한 세포는 Trypan Blue가 막을 투과하는 것을 격퇴합니다.세포사멸이 진행되어 세포막이 새는 경우 Trypan Blue는 세포막 장벽을 통과하여 세포 혈장에 축적되어 세포를 파란색으로 염색합니다.이 광학적 차이는 FL의 이미지 인식 알고리즘에 의해 깨끗한 살아있는 세포와 죽은 세포를 구별하는 데 사용할 수 있습니다.
- 명시야 모드에서 Countstar (R) Mira FL에서 획득한 3개의 Trypan Blue 염색 세포주의 이미지.